Výběr média biofiltru pro okouny velkoústé- Charakteristika biofilmu a výkonnost růstu
okoun velkoústý (Micropterus salmoides), také známý jako kalifornský bas, patří mezi Actinopterygii, Perciformes, Centrarchidae, Micropterus. Pochází z Kalifornie v USA a má výhody, jako je rychlý růst, lahodná chuť, bohatá výživa a vysoká ekonomická hodnota. Stal se jedním z důležitých sladkovodních druhů akvakultury v Číně. V posledních letech se na pozadí transformace a modernizace rybolovu a prudkého rozvoje digitálního a inteligentního rybolovu postupně objevila industrializovaná recirkulační akvakultura. Režim akvakultury tolstolobika se také posouvá z tradiční rybniční kultury k režimu zelené a účinné recirkulační akvakultury. Recirkulační akvakultura má výhody, jako je úspora vody a půdy, vysoká hustota osazení a pohodlné řízení. Pomocí fyzikálních, biologických, chemických metod a zařízení jsou pevné nerozpuštěné látky a škodlivé látky ve vodním útvaru odstraňovány nebo přeměněny na neškodné látky, takže kvalita vody odpovídá běžným růstovým potřebám kulturních druhů, čímž dochází k recyklaci vody v podmínkách akvakultury s vysokou-hustotou. Dosáhla dobrých ekonomických přínosů u mnoha pěstovaných druhů.
V současné době se výzkum recirkulační akvakultury tolstolobika zaměřuje především na reprodukci, výživu krmiva, výběr kmenů, přesné krmení, změny vodního prostředí a kvalitu výživy. Výzkum vnitřní průmyslové recirkulační akvakultury tolstolobika se zaměřuje především na kultivaci velkých-dospělých ryb a celo-cyklus chovu dospělých ryb není příliš propagován. Hlavním problémem, kterému čelí recirkulační akvakultura okouna obecného, je udržení dobrého vodního prostředí za podmínek vysoké-hustoty, aby byl zajištěn normální růst chovaných druhů. Úprava vody je jádrem recirkulační akvakultury a účinná biofiltrační média pro úpravu vody jsou základem systému úpravy vody. Ačkoli existuje mnoho zpráv o čištění vody biofiltračními médii, zprávy specificky o vlkodlaci industrializované recirkulační akvakultuře, zejména pokud jde o screening účinných biofiltračních médií pro úpravu vody, strukturu mikrobiálního společenství biofilmů na různých biofiltračních médiích, účinky úpravy a dopady na růst pěstovaných druhů, chybí. Byly vybrány tři typy biofiltračních médií, z nichž čtvercová houbová a fluidní kuličková biofiltrační média jsou levné a snadno se obsluhují a jsou široce používány při úpravě zbytkové vody v akvakultuře; Mutag Biochip 30 (zkráceně Biochip) je nový typ biofiltračního média, které se objevilo v posledních letech, s výhodami odolnosti proti nárazu a dlouhé životnosti, ale jeho praktické aplikační účinky nebyly hlášeny. Za tímto účelem byla použita vysoce výkonná sekvenační technologie 16S rDNA k analýze situace tvorby biofilmu u tří biofiltračních médií na úpravu vody a současně k analýze situace růstu okouna tolstolobikového, aby bylo možné odfiltrovat praktická biofiltrační média na úpravu vody a poskytnout účinná média pro úpravu vody pro průmyslovou recirkulační akvakulturu okouna velkoústého.
1. Materiály a metody
1.1 Testovací materiály
Biofiltrační média vybraná pro tento test bylačtvercová houba, Biočipakoule s fluidním ložem, jak je uvedeno vObrázek 1. Materiál čtvercové houby je polyuretan ve tvaru krychle s délkou strany 2,0 cm, měrným povrchem (3,2~3,5) × 10⁴ m²/m³. Materiál Biočipu je polyethylen, tvarovaný do kruhu o průměru 3,0 cm, tloušťka cca 0,11 cm, měrný povrch 5,5×10³ m²/m³. Materiál koule s fluidním ložem je polyetylen, efektivní specifický povrch 500~800 m²/m³.
1.2 Experimentální seskupení
Skupina ošetření biofiltračním médiem čtvercové houby byla nastavena jako skupina T1, odpovídající biofilm média byl označen B1 a odpovídající voda z akvakultury byla označena W1; skupina ošetřená biofiltračním médiem Biochip byla nastavena jako skupina T2, odpovídající biofilm média byl označen B2 a odpovídající voda z akvakultury byla označena W2; skupina pro ošetření biofiltračního média s fluidním ložem byla nastavena jako skupina T3, odpovídající biofilm média byl označen B3 a odpovídající voda z akvakultury byla označena W3.
1.3 Systém akvakultury
Experiment byl proveden v recirkulačním akvakulturním systému na Balidian Comprehensive Experimental Base of Zhejiang Institute of Freshwater Fisheries.Kultivačních nádrží bylo celkem 9, objem 500 l, účinný objem vody 350 l. Nádrž biofiltru byla vyrobena z plastového akvária o délce 80 cm, šířce 50 cm a výšce 50 cm, objem 200 l, účinný objem vody 120 l. Kultivační nádrž a nádrž biofiltru byly spojeny vodním čerpadlem, aby vytvořily vnitřní cirkulaci, průtok 3~4 l/min, s provzdušňováním pro okysličení, kyslík rozpuštěný ve vodě se udržoval nad 5 mg/l. Biofiltrační média byla náhodně seskupena, každý typ biofiltračního média měl 3 replikáty, každá biofiltrační nádrž byla naplněna 2,0 kg biofiltračního média, přičemž byl současně pozastaven pomalý-uvolňující zdroj uhlíku. Během období kultivace biofilmu se denně vyměňovalo 10 % vody.Počáteční ukazatele kvality vody: Celkový dusík (TN) 9,41 mg/L, Celkový fosfor (TP) 1,02 mg/L, Amoniakální dusík (TAN) 1,26 mg/L, Dusitanový dusík (NO₂⁻-N) 0,04 mg/L, Manganistan 3 mg/L index (COD7).
1.4 Test řízení ryb a kultury
Jako kulturní druh byl použit tolstolobik. Před začátkem testu byly aklimatizovány v recirkulační vodě po dobu 7 dnů.Test probíhal od 11. srpna 2022 do 22. září 2022 a trval 42 dní. Pro seskupení byli vybráni tolstolobici bez povrchových poranění, zdraví a čilí, do každé kultivační nádrže bylo nasazeno 60 ryb, krmených dvakrát denně, doba krmení byla 07:00 ráno a 16:00 odpoledne, denní množství krmení tvořilo asi 1,0 %~1,5 % z celkové tělesné hmotnosti ryb. Počáteční tělesná hmotnost testovaných ryb byla (20,46 ± 0,46) g.
1.5 Odběr vzorků
Vzorky vody z nádrže biofiltru byly odebírány každé 2 dny, přičemž byly zaznamenávány ukazatele, jako je teplota vody, rozpuštěný kyslík, hodnota pH a měření amoniakálního dusíku a dusitanového dusíku. Bylo zaznamenáno množství krmení, tělesná hmotnost ryb na začátku a na konci experimentu a míra přežití. Po experimentu byl 1 litr vody z každé kultivační nádrže shromážděn pomocí sterilních sběrných vaků na vodu, filtrován přes 0,22 um filtrační membránu a uložen v -80° mrazáku pro pozdější použití. Vzorky biofiltračního média o hmotnosti 0,5 g byly odebrány asepticky z každé nádrže biofiltru, uloženy ve sterilizované destilované vodě, důkladně protřepány, aby se odstranily mikroorganismy z povrchu biofilmu, poté přefiltrovány přes 0,22 um filtrační membránu a uloženy v mrazáku -80 stupňů pro pozdější použití.
1.6 Metody měření
1.6.1 Měření kvality vody
Teplota vody, rozpuštěný kyslík a hodnota pH byly detekovány pomocí aPřenosný analyzátor kvality vody HACH Hq40d. Koncentrace amoniakálního dusíku byla měřena pomocí spektrofotometrické metody Nesslerova činidla. Koncentrace dusitanového dusíku byla detekována spektrofotometrickou metodou s kyselinou chlorovodíkovou naftylethylendiaminem.
1.6.2 Měření výkonnosti akvakultury
Výpočtové vzorce pro rychlost přírůstku hmotnosti, poměr konverze krmiva a míru přežití ryb jsou následující.
l Míra přibírání na váze= (Konečná tělesná hmotnost ryb - Počáteční tělesná hmotnost ryb) / Počáteční tělesná hmotnost × 100 %;
l Konverzní poměr zdroje= spotřeba krmiva / přírůstek hmotnosti;
l Míra přežití= (počet ryb na konci experimentu / počáteční počet ryb na začátku experimentu) × 100 %.
1.6.3 Mikrobiální vysoce-propustnost sekvenování
Bakteriální DNA byla extrahována z vody a biofilmu pomocí soupravy pro extrakci bakteriální DNA (OMEGA Biotech, USA). K amplifikaci oblastí V3 a V4 bakteriální rDNA 16S byly použity specifické primery 338F (5'–ACTCCTACGGGAGGCAGCAG–3') a 806R (5'–GGACTACHVGGGTWTCTAAT–3'). PCR použila reakční systém TransGen AP221-02: 4 µl 5× FastPfu Buffer, 2 µL 2,5 mmol/L dNTP, 0,4 µL FastPfu Polymerase, 0,8 µL každého z 5 µmol/L dopředných a reverzních primerů, 0,2 µL templátu doplněného DNA 10 µL ddH20 na 20 ul. Podmínky reakce PCR: 95 stupňů po dobu 3 minut; 95 stupňů po dobu 30 s, 53 stupňů po dobu 45 s, 72 stupňů po dobu 1 minuty, 28 cyklů; Prodloužení o 72 stupňů na 10 min. PCR amplifikace byla provedena na PCR reakčním přístroji 9700 (Applied Biosystems® GeneAmp®, USA). Produkty PCR byly purifikovány pomocí kuliček a poté podrobeny sekvenování. Sekvenování bylo zadáno společnosti Shanghai Majorbio BioPharm Technology Co., Ltd.
1.6.4 Analýza mikrobiální diverzity
Nezpracovaná data získaná ze sekvenování byla nejprve spojena, následovalo filtrování kontroly kvality kvality čtení a efektu sestřihu a korekce směru sekvence, což vedlo k optimalizovaným datům. Po normalizaci nakonec získaných čistých dat byla provedena shluková analýza OTU (Operational Taxonomic Units) a taxonomická analýza s 97% podobností. Histogramy vzorků byly nakresleny pomocí Excelu a tepelné mapy byly nakresleny pomocí platformy Majorbio Cloud Platform.
1.7 Analýza dat
Statistický software SPSS 16.0 byl použit pro analýzu významnosti rozdílů a Duncanova metoda v analýze rozptylu (ANOVA) byla použita pro vícenásobná srovnání.
2. Výsledky a analýza
2.1 Doba tvorby biofilmu různých biofiltračních médií
Jak je uvedeno vObrázek 2,za podmínek přirozené tvorby biofilmu vykazoval obsah amoniakálního dusíku ve vodě v nádrži biofiltru trend rychlého vzestupu následovaného postupným poklesem.Obsah amoniakálního dusíkuve vodě biofiltrační nádrže odpovídající čtvercové houbě dosáhla svého vrcholu po 17 dnech, 8,13 mg/l, poté postupně klesala,nejnižší na 41 dnech, poté zůstává kolem 0,20 mg/l, což naznačujedoba tvorby biofilmu pro čtvercovou houbu byla asi 17 dní. Změny obsahu amoniakálního dusíku ve vodě nádrží biofiltru odpovídajících Biočipu a kouli s fluidním ložem byly v zásadě stejné a vykazovaly kolísavé změny. Vrchol amoniakového dusíku se objevil po 21 dnech, 7,88 mg/l a 7,57 mg/l, což naznačuje, žedoba tvorby biofilmu pro Biochip a kulové biofiltrační médium s fluidním ložem byla přibližně 21 dní. Obsah amoniakálního dusíkuv nádržích biofiltru odpovídajícíchtato dvě média klesla na nejnižší hodnotu po 43 dnech a 45 dnech.
2.2 Změny hodnoty pH vody v různých kultivačních nádržích
ZObrázek 3je vidět, že počáteční hodnota pH kultivační vody byla 7,3. Jak se doba kultivace prodlužovala, hodnota pH vody v každé kultivační nádrži vykazovala klesající trend. Po 12 dnech byla hodnota pH všech kultivačních nádrží nižší než 6,0, což je nepříznivé pro růst pěstovaných druhů.Po 12 dnech tvorby biofilmu je proto třeba věnovat pozornost úpravě hodnoty pH vody v kultivační nádrži.
2.3 Analýza složení mikrobiální komunity na biofilmech různých biofiltračních médií a ve vodě
2.3.1 Složení mikrobiální komunity na úrovni kmene
Jak je uvedeno vObrázek 4,na úrovni kmene byly dominantní bakterie na biofilmech tří biofiltračních médií stejné, všechny byly Proteobacteria, Actinobacteriota, Bacteroidota a Chloroflexi. Jejich kombinované relativní abundance byly 68,96 %, 64,74 % a 65,45 %. Dominantní bakterie v odpovídající kultivační vodě byly různé. Dominantní bakterií ve W1 byla Actinobacteriota s relativní četností 64,66 %. Dominantními bakteriemi ve W2 a W3 byly Proteobakterie s relativním výskytem 34,93 % a 50,10 %.
Obr. 4 Složení komunity bakterií v různém biofilmu a vodě na úrovni kmene
2.3.2 Složení mikrobiální komunity na úrovni rodiny
Jak je uvedeno vObrázek 5na biofilmech tří médií bylo asi 48 % bakterií bakteriální komunity s relativním výskytem méně než 3 %. Dominantní bakterie B1 a B2 byly stejné, obě byly Xanthomonadaceae s relativním výskytem 11,64 % a 9,16 % v uvedeném pořadí; dominantní bakterií B3 byla JG30-KF-CM45 s relativním výskytem 10,54 %. Dominantní bakterie v kultivační vodě byly odlišné od bakterií na biofiltračním médiu. Microbacteriaceae byly absolutně dominantní bakterie ve W1 s relativní četností 62,10 %; dominantní bakterie ve W2 kromě Microbacteriaceae (13,82 %) zahrnovaly také určitý podíl Rhizobiales (8,57 %); dominantní bakterií ve W3 byly Rhizobiales s relativním výskytem 38,94 %, následované Flavobacteriaceae s relativním výskytem 15,89 %.
Bylo spočítáno 50 nejlepších druhů na úrovni rodu. Po zpracování číselných hodnot byly změny abundance různých druhů ve vzorcích zobrazeny prostřednictvím barevného gradientu barevných bloků. Výsledky jsou uvedeny vObrázek 6. Leifsonia byla dominantní bakterií ve W1 s relativním výskytem 56,16 %; dominantní bakterie ve W2 byly Leifsonia (10,30 %) a Rhizobiales_Incertae_Sedis (8,47 %); dominantní bakterií ve W3 byla Rhizobiales_Incertae_Sedis s relativní četností 38,92 %. Mezi identifikovatelnými bakteriemi na biofilmech byl Thermomonas dominantním rodem v B1 s relativním výskytem 4,71 %; dominantní rody v B2 a B3 byly Nitrospira s relativní abundancí 4,41 % a 2,70 %.
Obr. 5 Složení komunity bakterií v různém biofilmua voda na rodinné úrovni
Obr. 6 Tepelná mapa složení bakteriální komunity v různém biofilmu a vodě na úrovni rodu
2.4 -Analýza diverzity mikrobiálních komunit na biofilmech různých biofiltračních médií a ve vodě
Jak je uvedeno vTabulka 1Shannonův index mikrobiálních komunit na biofilmech různých médií byl vyšší než u odpovídající kultivační vody, zatímco Simpsonův index byl opačný. Při analýze odpovídající kultivační vody byl Shannonův index bakteriální komunity u W2 nejvyšší, významně vyšší než u W1 a W3, zatímco Simpsonův index byl výrazně nižší než u W1 a W3, což naznačuje, že jeho -diverzita byla nejvyšší. Na rozdíl od -diverzity kultivační vody, ačkoli Shannonův index bakteriální mikrobiální komunity v médiu B2 byl největší a index Simpson byl nejmenší, nebyl mezi těmito třemi biofiltračními médii žádný významný rozdíl. Sekvenační pokrytí všech vzorků bylo nad 0,990, což ukazuje, že hloubka sekvenování mohla odrážet skutečnou úroveň vzorků.
2.5 Účinky různých biofiltračních médií na růst okouna obecného
Tabulka 2ukazuje růstovou situaci okouna velkoústého v různých skupinách biofiltračních médií. Po 44 dnech kultivace byla konečná tělesná hmotnost a míra přírůstku hmotnosti u okouna velkoústého ve skupině s kulturou čtvercových houbiček významně vyšší než ve skupinách s kuličkami s fluidním ložem a Biočip a poměr konverze krmiva byl významně nižší než u ostatních skupin. Míra přežití tolstolobika v každé skupině byla nad 97 %, mezi skupinami nebyl žádný významný rozdíl.
3. Závěr a diskuse
3.1 Doba tvorby biofilmu různých biofiltračních médií
Biofilmy se přichytí na povrch biofiltračního média. Materiál, struktura a specifický povrch biofiltračního média jsou hlavními faktory ovlivňujícími tvorbu biofilmu. Existují dvě běžné metody kultivace biofilmu: metoda tvorby přirozeného biofilmu a metoda tvorby inokulovaného biofilmu. Různé metody tvorby biofilmu ovlivňují dobu zrání biofilmu. Hu Xiaobing a kol. použili čtyři různé metody pro tvorbu biofilmu a výsledky ukázaly, že při použití metod, jako je přidávání chitosanu, iontů železa a inokulace vypouštěným kalem pro tvorbu biofilmu, byla doba zrání biofilmu kratší než u metody tvorby přirozeného biofilmu. Ačkoli přidání prospěšných mikroorganismů nebo aktivních látek může zkrátit dobu tvorby biofilmu, existují problémy, jako je obtížnost získání inokula, složitá procesní konstrukce a vysoké náklady. Guan Min et al. za podmínek nízkého obsahu organické hmoty přímo použili surovou vodu pro tvorbu biofilmu a nádrž s biofiltrem se úspěšně rozběhla prostřednictvím přirozené tvorby biofilmu po asi 38 dnech. Tento výsledek výzkumu je podobný výsledkům této studie. Výsledky této studie ukazují, že za stejných podmínek tvorby biofilmu byla doba tvorby biofilmu čtvercové houby kratší než u ostatních dvou biofiltračních médií. To může souviset s velkým specifickým povrchem, silnou hydrofilitou a snadností přichycení biofilmu čtvercové houby. Specifický povrch čtvercové houby je až 32 000 až 35 000 m²/m³, což je mnohem více než u ostatních dvou médií. Dále je materiálem čtvercové houby polyuretan, který se působením vody rozpíná, má vysokou hydrofilitu a přispívá k uchycení a růstu mikroorganismů ve vodě. Výsledky výzkumu Li Yong et al. také ukázaly, že účinnost při spouštění{20}} a účinnost odstraňování amoniakálního dusíku u polyuretanové houby byly lepší než u polypropylenu, což je v souladu s výsledky této studie. Navíc v této studii byla specifická plocha povrchu biofiltračního média Biochip až 5 500 m²/m³, mnohem větší než u fluidního kulového biofiltračního média, ale doba tvorby biofilmu byla v zásadě stejná jako u fluidního kulového média. To může souviset s velikostí pórů. Některé studie poukázaly na to, že vnitřní prostorové měřítko biofiltračních médií ovlivňuje růst biofilmů. Ačkoli některá biofiltrační média mají velký specifický povrch, jejich póry jsou jemné a velikost pórů je mnohem menší než tloušťka zralého biofilmu, což může snadno vést k ucpání pórů, což ztěžuje biofilmu v pórech dosáhnout maximální akumulace. Póry biočipu jsou malé, což má za následek pomalejší růst biofilmu a delší dobu tvorby biofilmu.
3.2 Složení mikrobiální komunity biofiltračních médií a kultivační vody
V této studii byly dominantní bakterie na biofiltračním médiu a v odpovídající kultivační vodě odlišné. Shannonův index biofilmů na biofiltračním médiu byl vyšší než u odpovídající kultivační vody, což ukazuje, že biofiltrační médium má účinek na obohacení mikroorganismů. To je v souladu s výsledky výzkumu Hu Gaoyu et al. Existuje mnoho faktorů ovlivňujících strukturu mikrobiálního společenství, jako je typ nosiče, hloubka filtru, slanost, koncentrace organické hmoty atd. Stejné biofiltrační médium bude mít za různých kultivačních podmínek na biofilmu různá mikrobiální společenství. Autor kdysi studoval situaci tvorby biofilmu fluidního kulového biofiltračního média v recirkulačním systému akvakultury pro obří sladkovodní krevety (Macrobrachium rosenbergii). Výsledky ukázaly, že dominantním kmenem na jeho biofilmu byl Firmicutes, zatímco v této studii byl dominantním kmenem na biofilmu s fluidním ložem Proteobacteria. Hlavním důvodem tohoto rozdílu mohou být různá prostředí akvakultury. Tři biofiltrační média použitá v této studii měla stejné počáteční podmínky pro kultivaci biofilmů. Je možné, že kvůli odlišným fyzikálním vlastnostem médií byla také odlišná tloušťka vytvořeného biofilmu a vnitřní prostředí, což mělo za následek rozdíly v mikrobiálních komunitách. Rozdíl v nosičích je proto hlavním důvodem rozdílů v mikrobiálních společenstvech. Kromě toho se během procesu akvakultury vzájemně ovlivňují vodní prostředí a mikrobiální společenství. Důvody rozdílů v mikrobiálních společenstvech mohou souviset s faktory prostředí. Například výzkum Yuan Cuilina ukázal, že celkový počet heterotrofních bakterií v těle; Fan Tingyu a spol. věřil, že hodnota pH může významně ovlivnit celkový obsah dusíku ve vodě a hraje klíčovou roli v distribuci společenstev vodních bakterií ve vnitrozemských úsecích řek. Amonný dusík, celkový fosfor a chlorofyl také v různé míře ovlivňují složení bakteriálních společenstev ve vodním útvaru. Environmentální faktory způsobující rozdíly ve složení mikrobiálních společenstev v této studii ještě potřebují další potvrzení.
3.3 Účinky různých biofiltračních médií na růst okouna obecného
Z výsledků růstu vyplývá, že okoun velkoústý ve skupině hranatých houbovitých rostl nejrychleji, s mírou přírůstku hmotnosti výrazně vyšší než u ostatních dvou médií a nejnižším poměrem konverze krmiva. To je v souladu s předchozími výsledky výzkumu. V této studii byla tvorba biofilmu a akvakultura prováděny současně. Soudě podle doby tvorby biofilmu biofilm čtvercové houby dozrál dříve a po vyzrání biofilmu byly koncentrace amoniakálního dusíku a dusitanového dusíku ve vodě vždy nižší než u ostatních dvou médií. Čtvercová houba má navíc určitou filtrační kapacitu, obsah pevných nerozpuštěných látek v kultivační vodě byl nižší a voda byla relativně čirá. Lepší růst tolstolobika ve skupině hranatých hub může souviset s dobrou kvalitou vody. Nicméně účinky čištění čtvercových houbových médií na celkový dusík, celkový fosfor a manganistanový index ve vodě vyžadují další studium. Stojí za zmínku, že během experimentu vykazovala hodnota pH celkově klesající trend. Po 12 dnech kultivace byla hodnota pH všech kultivačních nádrží nižší než 6,0, což je v souladu s výsledky výzkumu Zhang Longa et al. Pokles hodnoty pH je způsoben tím, že během procesu kultivace biofilmu vzniká velké množství vodíkových iontů, což vede ke snížení hodnoty pH vody. Proto je během procesu tvorby biofilmu nutné rychle upravit hodnotu pH vody v kultivační nádrži, aby bylo zajištěno, že je v normálním rozmezí růstu pěstovaných druhů. S ohledem na ekonomické náklady je tržní cena čtvercové houby 70 ~ 100 RMB/kg a její cena je mezi ostatními dvěma biofiltračními médii. V kombinaci s výsledky růstu je z krátkodobého hlediska čtvercová houba relativně praktickým biofiltračním médiem pro úpravu vody pro recirkulační akvakulturu. Hranatá houba má však špatnou houževnatost a krátkou životnost. Jeho dlouhodobé-účinky používání a účinky akvakultury vyžadují další ověření.
v souhrnuza podmínek přirozené tvorby biofilmu má biofiltrační médium se čtvercovou houbou nejkratší dobu tvorby biofilmu, průměrnou cenu a konečná tělesná hmotnost a míra přírůstku hmotnosti u okouna velkoústého ve skupině čtvercových houbovitých byly významně vyšší než u ostatních dvou biofiltračních médií. Krátkodobě jde o poměrně praktické biofiltrační médium na úpravu vody pro recirkulační akvakulturu.